AAV 重慶宣尊生物(wù)科(kē)技(jì )有(yǒu)限公(gōng)司
學(xué)習中(zhōng)心

5分(fēn)鍾了解\\透射電(diàn)鏡的廣泛應用(yòng)

時間:2023-07-21 熱度:1136

簡介:

透射電(diàn)子顯微鏡(Transmission Electron Microscope,簡稱TEM),可(kě)以看到在光學(xué)顯微鏡下無法看清的小(xiǎo)于0.2um的細微結構,這些結構稱為(wèi)亞顯微結構或超微結構。要想看清這些結構,就必須選擇波長(cháng)更短的光源,以提高顯微鏡的分(fēn)辨率。1932年Ruska發明了以電(diàn)子束為(wèi)光源的透射電(diàn)子顯微鏡,電(diàn)子束的波長(cháng)要比可(kě)見光和紫外光短得多(duō),并且電(diàn)子束的波長(cháng)與發射電(diàn)子束的電(diàn)壓平方根成反比,也就是說電(diàn)壓越高波長(cháng)越短。目前TEM的分(fēn)辨力可(kě)達0.2nm。

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TEM工(gōng)作(zuò)原理(lǐ):由電(diàn)子槍發射出來的電(diàn)子束,在真空通道中(zhōng)沿着鏡體(tǐ)光軸穿越聚光鏡,通過聚光鏡将之會聚成一束尖細、明亮而又(yòu)均勻的光斑,照射在樣品室内的樣品上;透過樣品後的電(diàn)子束攜帶有(yǒu)樣品内部的結構信息,樣品内緻密處透過的電(diàn)子量少,稀疏處透過的電(diàn)子量多(duō);經過物(wù)鏡的會聚調焦和初級放大後,電(diàn)子束進入下級的中(zhōng)間透鏡和第1、第2投影鏡進行綜合放大成像,最終被放大了的電(diàn)子影像投射在觀察室内的熒光屏闆上;熒光屏将電(diàn)子影像轉化為(wèi)可(kě)見光影像以供使用(yòng)者觀察。 



腦組織取材及應用(yòng)

腦組織取材法:在一般情況下,腦組織先進行灌注固定(4%多(duō)聚甲醛溶液),待固定完成後應馬上打開顱骨,暴露出所要取材的位置,根據取材的要求以及實驗目的割取相應的部位,如研究腦神經軸索、髓鞘以及神經膠質(zhì)細胞,建議取材于腦組織白質(zhì)部分(fēn),此處有(yǒu)髓神經纖維相對較多(duō),膠質(zhì)細胞比較豐富;如要研究神經元以及血腦屏障結構,建議取材于腦皮質(zhì)的灰質(zhì)部分(fēn),而且最好做定向包埋,以神經元長(cháng)軸方向(大約為(wèi)腦組織的矢狀面)作(zuò)為(wèi)切面方向,這樣可(kě)以很(hěn)好地觀察神經元細胞核、軸突以及樹突結構的變化,突觸以及毛細血管的結構也比較容易見到。


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圖:暴露于 AgNP 的動物(wù)腦組織的代表性 TEM 顯微照片顯示 RER(箭頭)和擴大的高爾基體(tǐ)複合體(tǐ)(G)的腫脹碎片。

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圖:自噬抑制劑對腦組織的亞細胞結構具(jù)有(yǒu)保護作(zuò)用(yòng)。采用(yòng)透射電(diàn)子顯微鏡(TEM)觀察小(xiǎo)鼠腦組織亞細胞結構的病理(lǐ)變化。在 JEV+Rapa 和 JEV 組觀察到腦組織線(xiàn)粒體(tǐ)嚴重損傷,在 JEV+Wort 和 JEV+CQ 組觀察到腦組織線(xiàn)粒體(tǐ)輕微損傷(紅色箭頭,線(xiàn)粒體(tǐ);比例尺,2 µm)。

睾丸及附睾組織取材及應用(yòng)


睾丸及附睾組織取材方法:由于睾丸組織比較松軟,固定難度較大,目前大多(duō)采取灌注固定法進行固定,但此方法如果處理(lǐ)不當,很(hěn)可(kě)能(néng)會造成固定不良,原因是睾丸的血供離心髒比較遠(yuǎn),固定液難以到達,睾丸曲細精(jīng)管基膜比較厚,固定液難以滲透,導緻固定不良。我們還可(kě)以采用(yòng)注射固定法即用(yòng)注射針直接插入睾丸内部,從多(duō)個方向進行注射固定液,然後割取觀察部位進行進一步浸泡固定;另外一種方法就是直接割取觀察部位進行浸泡固定,需要注意的是,取材的睾丸組織必須切的很(hěn)細,讓固定液直接滲透入曲細精(jīng)管的斷面,這樣,各層生殖細胞都會得到很(hěn)好的固定,不過比較麻煩的就是每次操作(zuò)後都要離心處理(lǐ)。另外需要注意的是,要觀察生精(jīng)細胞,必須取材于睾丸的睾丸網部位,如果取材于直精(jīng)小(xiǎo)管部位,就看不到生精(jīng)細胞了。大鼠與小(xiǎo)鼠的睾丸網比較表淺,就在白膜下附近。如果要觀察成熟精(jīng)子,最好取材于附睾的尾部,此處精(jīng)子已基本成熟,而且精(jīng)子密度最高。

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圖:附睾 Prm1 缺陷精(jīng)子染色質(zhì)濃縮和 ROS 誘導的 DNA 損傷分(fēn)析。(A) Prm1+/+、Prm1+/- 和 Prm1-/- 附睾精(jīng)子的代表性透射電(diàn)子顯微照片。(B) 來自 Prm1+/+、Prm1+/− 和 Prm1−/− 雄性 (n=3) 的附睾精(jīng)子 DNA 濃縮的定量;對每名(míng)男性 100 個精(jīng)子進行了分(fēn)析。(C) Prm1−/−附睾精(jīng)子的透射電(diàn)子顯微照片。(D) 載有(yǒu)從 Prm1+/-、Prm1-/-、Prm2+/-、Prm2-/- 和通過電(diàn)泳分(fēn)離的 WT 雄性附睾精(jīng)子分(fēn)離的基因組 DNA 的瓊脂糖凝膠。載有(yǒu)梯子 (L) 的其他(tā)車(chē)道已從圖像中(zhōng)剪下。(E) 8-OHdG 陽性精(jīng)子在 Prm1+/+、Prm1+/- 和 Prm1-/- 小(xiǎo)鼠 (n=3) 的附睾頭和尾部組織切片上的百分(fēn)比。(F) 來自 Prm1+/+、Prm1+/- 和 Prm1-/- 雄性的睾丸、附睾頭和附睾尾組織切片中(zhōng)針對 8-OHdG 的代表性 IF 染色。

肺組織取材及應用(yòng)


肺組織取材:肺組織取材比較困難,因為(wèi)肺組織内部氣體(tǐ)無法徹底排放而導緻組織懸浮于固定液表面,使得固定液不能(néng)及時滲透進組織内部而導緻大部分(fēn)組織固定不良或無法固定。目前提倡的還是主動脈灌注固定。如果條件不成熟,隻能(néng)采取浸泡固定。組織取出後盡量切得小(xiǎo),同時利用(yòng)震蕩的方法将組織沉入固定液中(zhōng),還有(yǒu)一種方法就是将組織放在載玻片上,并将固定液滴在其上,用(yòng)另外一片載玻片輕輕壓在上面并輕輕擠壓,一壓一松,可(kě)以看到固定液内有(yǒu)小(xiǎo)氣泡溢出,直到小(xiǎo)氣泡消失為(wèi)止,但必須注意力度不能(néng)太大,否則組織的細胞将會被破壞。在固定之前,取材者必須清楚自己的研究目的,從而采取相應部位進行取材。如果以研究支氣管黏膜為(wèi)主的(這裏指肺内的支氣管),盡量取材于靠近肺門部位,這裏有(yǒu)具(jù)有(yǒu)軟骨的大支氣管,在肺葉的内側1/2部分(fēn),有(yǒu)小(xiǎo)支氣管、細支氣管以及終末細支氣管;如果主要研究肺泡上皮細胞、終末細支氣管、呼吸性細支氣管以及肺泡隔的結構等,建議取材于肺葉靠近胸膜一側或者肺尖部;如果研究肺動脈内皮或壁的結構,建議取材于肺門附近的肺葉組織,這裏的大小(xiǎo)動脈數量比較多(duō),而遠(yuǎn)側肺呼吸部的動脈極少。

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圖:小(xiǎo)鼠肺組織(10000x,比例尺 = 2 μm)、細胞核 (Nu)、層狀體(tǐ) (LBs) 和線(xiàn)粒體(tǐ) (Mt) 的透射電(diàn)子顯微鏡圖像。

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圖:小(xiǎo)鼠肺組織透射電(diàn)子顯微鏡的代表性顯微照片。高氧組肺泡Ⅱ型上皮細胞表現出鐵死亡典型的線(xiàn)粒體(tǐ)形态異常(黑色箭頭),包括線(xiàn)粒體(tǐ)萎縮、密度增加和膜結構破裂、線(xiàn)粒體(tǐ)嵴減少。LB,片狀體(tǐ)。


腎組織取材及應用(yòng)


腎組織取材:腎外包被一層薄膜,主要由纖維組織和少量平滑肌組成。一般腎标本取材部位在腎實質(zhì),實質(zhì)由皮質(zhì)與髓質(zhì)兩部分(fēn)組成,一般取材部位在腎皮質(zhì),皮質(zhì)位于腎的外周,其厚度因動物(wù)種類不同而有(yǒu)差異,一般在1mm—4mm。腎組織除了采取灌注固定外,直接浸泡固定的效果也是比較滿意。腎組織取材相對比較簡單,一般臨床上均采用(yòng)穿刺術,然後根據需要切取皮質(zhì)或髓質(zhì)進行觀察。

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圖:BSHX減輕腎髒的組織病理(lǐ)學(xué)和超微結構病理(lǐ)學(xué)。(A)腎髒外觀和大小(xiǎo)的初步觀察。(B)腎髒的蘇木(mù)精(jīng)和伊紅(HE)染色(×400)。(C)高碘酸希夫(PAS) ) 腎髒染色 (×400)。(D) 腎髒透射電(diàn)子顯微鏡(比例尺,2 μm)。(E)腎髒透射電(diàn)子顯微鏡(比例尺,500 nm)。

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圖:巨噬細胞耗竭可(kě)改善糖尿病小(xiǎo)鼠的腎髒損傷并減少 M1 巨噬細胞浸潤。(A) 小(xiǎo)鼠腎組織的組織病理(lǐ)學(xué)染色和透射電(diàn)子顯微鏡 (TEM)。蘇木(mù)精(jīng)-伊紅(HE)染色(放大倍數:200×);高碘酸席夫(PAS)染色(放大倍數:400×);馬松三色(Masson)染色(放大倍數:200×);過碘酸-甲胺銀(PASM)染色(放大倍數:400×);透射電(diàn)子顯微鏡圖像(放大倍數:4000×)。(B)小(xiǎo)鼠腎髒的F4/80免疫組化染色。原始放大倍數:200×.(C)CD68/iNOS 小(xiǎo)鼠腎組織共免疫熒光染色。

動脈取材及應用(yòng)


動脈取材法:動脈遍布全身,直徑大小(xiǎo)不同,一般小(xiǎo)動脈(直徑小(xiǎo)于1mm)切成長(cháng)約2mm短柱狀即可(kě)。如果是大動脈,可(kě)以将動脈剖開,沿着縱軸将動脈壁切成約長(cháng)2mm寬1mm的長(cháng)條形。注意在取材時盡量使用(yòng)鋒利的刀(dāo)片,且不要擠壓血管,由于血管内皮比較脆弱,容易受傷脫落。

圖片

圖:培養 5 天後豬的再細胞化動脈。動脈腔側的代表性掃描電(diàn)子顯微鏡 (SEM) 圖像:(A) 沒有(yǒu)細胞的脫細胞動脈,(B 和 C) 非聚合物(wù)塗層的再細胞化動脈,白色箭頭指出細胞之間的間隙,(D) 聚合物(wù)-塗層脫細胞動脈,(E 和 F)聚合物(wù)塗層再細胞化動脈顯示連續單層細胞的形成。(放大倍率;(A、C、D 和 F)x4000,(B 和 E)x1600)。(G 和 H) 垂直于 (G) 天然動脈和 (H) 聚合物(wù)塗層再細胞化動脈的動脈長(cháng)軸切割的切片的透射電(diàn)子顯微鏡 (TEM) 分(fēn)析。(H) 白色星号表示兩個細胞之間的細胞粘附,白色箭頭表示細胞與血管腔側之間的粘附。L:管腔,EC:内皮細胞,N:細胞核,ca:細胞

圖片

圖:二甲雙胍保護股動脈超微結構免受繼發于糖尿病的改變。實驗結束時、第 12 周對照組未治療組(A、B)、糖尿病說明了組 (T2DM) (C,D) 和治療組 (Met + T2DM) (E,F)。請注意,(A、E)中(zhōng)的箭頭指向質(zhì)膜,(B)中(zhōng)的箭頭指向被破壞的質(zhì)膜。(A,E) 中(zhōng)的箭頭指向完整的内膜表面,(C) 中(zhōng)的箭頭指向受損的内膜表面。而 (B,F) 中(zhōng)的箭頭指向完整的質(zhì)膜,而 (D) 中(zhōng)的箭頭指向不規則形狀的質(zhì)膜。(D,F) 中(zhōng)的星号分(fēn)别指向受損和完整的肌動蛋白和肌球蛋白絲狀網絡。N:細胞核;Lu:血管腔;En:内皮細胞;米:線(xiàn)粒體(tǐ);RER:粗面内質(zhì)網;e:外彈力層;V:液泡;SMC:平滑肌細胞。(G) 中(zhōng)的直方圖表示對上述組的内膜損傷百分(fēn)比的定量分(fēn)析。

骨組織取材及應用(yòng)


骨組織取材:骨組織分(fēn)布廣,有(yǒu)的較硬,有(yǒu)的較軟,骨組織因為(wèi)無機物(wù)沉積較多(duō)(主要為(wèi)鈣鹽的沉積)而較硬,必須經過脫鈣處理(lǐ)(軟骨組織可(kě)以不用(yòng)脫鈣)。首先将骨組織切取一小(xiǎo)片,大概1-2毫米大小(xiǎo),經過4%戊二醛固定2小(xiǎo)時以上,再經生理(lǐ)鹽水漂洗後放入脫鈣液内進行脫鈣,一般選擇溫和的EDTA脫鈣液脫鈣,也可(kě)利用(yòng)酸類進行脫鈣,至于判斷脫鈣程度如何,可(kě)以使用(yòng)鑷子夾住骨片,輕輕将兩端向中(zhōng)心壓攏,感覺其彈性強度進而判斷脫鈣程度。脫鈣完成後先經生理(lǐ)鹽水漂洗後再用(yòng)4%戊二醛固定2小(xiǎo)時,然後按常規方法進行處理(lǐ)。

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圖:(A) 感染性骨骼的光學(xué)顯微鏡圖像(放大倍數 × 40)。(B) (A) 的放大倍率。骨髓炎患者骨細胞的透射電(diàn)子顯微鏡圖像(放大倍數 × 5000)。(C) (B) 的放大倍數。骨細胞核周區(qū)域的透射電(diàn)子顯微鏡圖像。可(kě)見的腫脹線(xiàn)粒體(tǐ)簇,嵴耗盡,基質(zhì)密度降低。箭頭示例性地指示線(xiàn)粒體(tǐ)(放大倍數 × 20,000)。

遊離細胞處理(lǐ)及應用(yòng)


遊離細胞處理(lǐ)及應用(yòng):組織培養和遊離細胞(如血細胞、脫落細胞以及細菌病毒等),常懸浮分(fēn)散在介質(zhì)中(zhōng),首先必須将其凝集成團,然後進行固定,具(jù)體(tǐ)做法如下:1、血漿凝集法:将抗凝全血離心分(fēn)層(2000/每分(fēn)鍾,10—20分(fēn)鍾),用(yòng)毛細吸管沿着管壁輕輕的将上清液吸取,接着用(yòng)吸管吸取固定液,并沿着管壁将2.5%戊二醛固定液慢慢地加入進行固定,然後把它放在4℃冰箱内保存。2、血漿(血清)混合法:如為(wèi)細菌、病毒、脫落細胞、培養細胞則先将它們制成懸液放置于離心管内(最好是玻璃的),離心成團(10003000/分(fēn)鍾,10分(fēn)鍾),去上清液後加入2.5%戊二醛固定10分(fēn)鍾左右,離心,再棄去多(duō)餘的固定液,然後和少量抗凝血漿或血清混合均勻,離心成團,去上清液,用(yòng)吸管吸取2.5%戊二醛固定液沿着離心管壁緩慢滴入,盡量避免團塊分(fēn)散,靜置于4℃冰箱内保存備用(yòng)。

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圖:A:SMMC-7721細胞核基質(zhì)絲的TEM觀察;B:HMBA處理(lǐ)的SMMC-7721細胞核基質(zhì)絲的TEM觀察;C:SMMC-7721細胞中(zhōng)間絲的TEM觀察;D:HMBA處理(lǐ)的SMMC-7721細胞中(zhōng)間絲的TEM觀察;E:SMMC-7721細胞中(zhōng)NM-IF系統的TEM觀察。L:葉片;NM:核基質(zhì);IF:中(zhōng)間燈絲;F:HMBA處理(lǐ)的SMMC-7721細胞NM-IF系統的TEM觀察。

外泌體(tǐ)的應用(yòng)


遊離細胞處理(lǐ)及應用(yòng):外泌體(tǐ)是直徑約為(wèi) 30~200 nm,密度在 1.13~1.21 g/mL 的小(xiǎo)囊泡。外泌體(tǐ)天然存在于體(tǐ)液中(zhōng),包括血液、唾液、尿液和母乳等,外泌體(tǐ)是活細胞分(fēn)泌的來源于晚期核内體(tǐ) (也稱為(wèi)多(duō)囊泡體(tǐ)) 的膜性囊泡。通過透射電(diàn)鏡我們可(kě)以清楚直觀的看到外泌體(tǐ)的典型結構。

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圖:提取的血清囊泡的電(diàn)子顯微鏡圖像。外泌體(tǐ)的典型尺寸直徑小(xiǎo)于 100 納米。

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圖:從乳腺癌細胞 (BCC) 和 MCF-7/TAMR-1(M/T) 細胞中(zhōng)分(fēn)離的外泌體(tǐ)的特征。(A) 從 BCC 和 M/T 細胞中(zhōng)分(fēn)離的外泌體(tǐ)的代表性圖像,使用(yòng)透射電(diàn)子顯微鏡拍攝和外泌體(tǐ)直徑範圍(右欄)。比例尺 = 500 nm(左列)和 200 nm(中(zhōng)間列)。 (B) 用(yòng)蛋白質(zhì)印迹法檢測到的 BCC 和 M/T 細胞及其外泌體(tǐ)中(zhōng)外泌體(tǐ)标記物(wù)的表達。



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